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采用顶空固相微萃取气质联用技术破译山药、牛蒡中的香气密码
发布时间:2024年03月15日   作者:管理员    阅读次数:131

1范围

适用于采用顶空固相微萃取-气质联用技术测定山药、牛蒡中的香气成分以及分析主要化合物对香气的贡献值。

2原理

固相微萃取是一种利用有机物和溶剂“相似相溶的原理制备而来的,是一种基于气固吸附(吸收)和液固吸附(吸收)平衡的富集方法,利用分析物对活性固体表面(熔融石英纤维表面的涂层)有一定的吸附(吸收)亲合力而达到被分离富集的目的,高分子固定相涂层对有机物的萃取和富集是一种动态平衡过程,涂层要对有机分子有较强的选择。

3仪器设备

气相色谱质谱仪:单杆或者三重四级杆质量分析器,EI源。

分析天平:感量0.1mg。

固相微萃取设备:含手柄,多种型号的萃取头50/30umDVB/CAR/PMDS(聚二甲基硅氧烷/碳分子筛/聚二乙烯基苯);75um CAR/PDMS;65umPDMS/DVB;PA(聚丙烯酸酯)。

恒温水浴锅。

4分析步骤

4.1称量

用天平称取2.0 g样品置于20 mL顶空瓶中。

4.2样品前处理

加入3 mL饱和氯化钠溶液,迅速密封,将顶空瓶放入恒温水浴装置中,将老化过的进样针插入密封的顶空瓶中,于60 ℃水浴中萃取1小时后取出,立即插入气质联用仪进样口中,热解析3 min。萃取头每次萃取样品前于250 ℃下老化5 min,以降低记忆效应。

4.3仪器分析条件

4.3.1气相色谱条件

a色谱柱为TG-5MS(30 m×0.25 mm×0.25 μm)弹性石英毛细管柱;

b载气为高纯氦气(纯度99.999 %),载气流速为1.2 ml/min,采用不分流进样;

c进样口温度为250 ℃;

d程序升温:初始温度40 ℃保持2 min,然后以3 ℃/min升到100 ℃,保持1 min,再以5 ℃/min升到160 ℃保持1 min,再以10 ℃/min升到280 ℃,保持1 min。

4.3.2质谱条件

离子源为EI源,传输线温度:280 ℃;离子源温度:300 ℃;电子能量:70 eV;扫描范围(m/z):33-550 amu,采用全扫描采集模式。

4.4 SPME采集条件的选取

SPME采集效率的影响因素有萃取头的选择、萃取时间、萃取温度、解析时间和样品量。萃取头的选择影响总离子流图的总峰面积的萃取效果,萃取时间和萃取温度会影响挥发性化合物的释放和总丰度,而解析时间会影响方法的灵敏度。

因素水平表

水平

萃取温度

萃取时间

解析时间

样品量

1

40

30

2

1

2

50

40

3

2

3

60

50

4

3

4

70

60

5

4


4.4.1萃取头的选择  萃取头的选择对挥发性物质成分结果分析影响较大,萃取头涂层的极性是决定萃取效率的一个关键因素,选择合适极性的萃取涂层,可实现对特定化合物的有效萃取。DVB/CAR/PMDS萃取头对烃类、醇类、酸类萃取效果较好,对醛类、酮类、酯类挥发性成分萃取效果较差但均有吸附,而且保留时间和峰形较为理想;PA萃取头对酯类、醛类挥发性成分具有选择性吸附,对酮类挥发性成分吸附性较差;PDMS萃取头对烃类、醛类挥发性成分的吸附性效果较好,对酯类、酸类挥发性成分吸附性效果较差;PDMS/DVB萃取头对烃类、醇类挥发性成分的萃取效果较好,对酯类、酸类挥发性成分的萃取效果较差。山药的挥发性成分主要包括烃类、醇类、醛类、酮类、酸类、酯类,固选择DVB/CAR/PMDS萃取头。

4.4.2 萃取时间  挥发性化合物在纤维上的吸附是一个动态平衡过程,是样品、顶空和纤维三者之间的平衡,当三者达到动态平衡时才会有最大吸附量。随着平衡时间的延长,释放出的挥发性化合物种类和总丰度都会增加。当吸附量达到饱和时,增加就变得缓慢,通过多次试验表明,选取60 min为山药样品的最佳萃取时间。

4.4.3 萃取温度  研究表明,在水浴100 ℃范围内,当温度升高时,SPME萃取能力增强,释放出来的挥发性化合物种类和总丰度会随之增加,但温度过高时,会使萃取头的分配系数降低,吸附量减小,通过多次试验表明,选取60 ℃为山药的最佳萃取温度。

4.4.4 解析时间  研究表明,解析时间影响方法的灵敏度,解析时间过短会污染下一个样品,而解析时间过长会影响萃取头的使用寿命。选取最佳解析时间非常重要,通常解析时间为2~5 min,峰数和主峰面积会不断增加,3 min后,峰数变化不大,故选取3 min为最佳解析时间。

4.4.5样品量  随着样品量的增加,总离子流图的总峰面积呈现先增加后减少的趋势;当样品量不超过2g时,随着样品量的增加,峰面积呈显著增加;当样品量为2g时,此时顶空瓶内上部空间气体与下部样品达到了动态平衡,总峰面积达到最大;当样品量超过2g后,随着样品量的增加,顶空空间变小,打破动态平衡,顶空瓶的萃取头出现饱和吸附,总峰面积逐渐减少,最后达到稳定,因此选择样品量2g为最佳。

4.5气相色谱质谱分析

4.5.1定性分析

将试样注入气相色谱质谱仪,记录总离子流图和质谱图,根据保留时间和对应的质谱图进行定性,将试样得到的质谱图与NIST17谱库标准质谱图进行对比,同时结合相对保留时间进行定性。



图1 样品挥发性成分总离子流色谱图

4.5.2 定量分析

相对百分含量利用面积归一化法进行计算。

表1  样品中各类挥发性成分及相对含量(%)

峰号

保留时间(min

化合物名称

分子式

相对含量(%

1

9.39

4-羟基丁酸

C4H8O3

25.62

2

11.23

苯甲醛

C7H6O

8.69

3

13.01

癸烷

C10H22

3.07

4

13.54

乙基卡必醇

C6H14O3

32.52

5

14.66

2-乙基-1-己醇

C8H18O

3.89

6

15.05

苯甲醇

C7H8O

7.26

7

17.91

十一烷

C11H24

7.78

8

19.33

十八酸乙烯酯

C20H38O2

0.16

9

19.91

6-甲基-十八烷

C19H4O

0.68

10

20.83

3-十八烷氧基-十八烯酸丙酯

C39H76O3

0.34

11

21.77

11-二甲基-24-二异丙基-环己烷

C14H28

0.41

12

22.62

5-甲基-5-乙基-癸烷

C13H28

0.89

13

25.30

11-二(十二烷氧基)-十六烷

C40H82O2

0.11

14

25.51

蛇床酮

C26H38O4

0.08

15

25.71

22-二甲基-1-辛醇

C10H22O

0.50

16

27.55

10-甲基十九烷

C20H42

0.31

17

28.60

3-乙基-5-2-乙基丁基)-十八烷

C26H54

0.42

18

29.18

2479-二甲基-5-癸炔-47-二醇

C14H26O2

0.41

19

30.36

26-二叔丁基-14-苯醌

C14H20O2

0.79

20

33.65

2,2,4-三甲基-3-羧基异丙基-戊酸异丁酯

C16H30O4

0.66

21

34.34

二十二碳六烯酸甘油酯

C69H98O6

0.05

22

34.54

癸酸癸酯

C20H40O2

0.75

23

35.51

24-二叔丁基苯硫酚

C14H22S

1.21

24

37.41

35-二叔丁基-4-对羟基苯乙酮

C16H24O2

0.36

25

38.10

4,6-二异丙基-1133-四甲基-5-茚醇

C19H30O

0.12

26

39.45

三十七醇

C37H76O

0.06

27

39.69

3-乙酰氧基-78-环氧羊毛甾烷-11-

C32H54O4

0.80

28

40.16

26-二叔丁基-4-1-氧代丙基)苯酚

C17H26O2

0.15

29

40.94

异胆酸乙酯

C26H44O5

0.17

30

42.85

3-十八烷氧基-十八烯酸丙酯

C39H76O3

0.18

注:挥发性物质相对含量=挥发性物质的峰面积/总挥发性物质的峰面积;测试样品重复试验一次,取平均值作为各挥发性物质含量。

5注意事项

5.1 控制检测环节中的采样质量

固相微萃取技术的应用,特别是人工采样,需要科学调控样品的采样速度,减少在采集过程中出现污染问题,应设定固定的采样模式和采样流程,有效提高采集样品的质量。

5.2 把控检测试验的标准化形式

在固相微萃取技术的应用过程中,需要加强对实验人员的专业技术培训,在检测试验开展前,严格按照标准化的试验流程进行检测,减少实验人员对专业技术的掌控能力不足而引发的一系列连锁问题。

5.3 防止试验材料的重复性检验

虽然固相微萃取技术能够实现检测样品的重复性检测,但是在实际检测过程中需要保持检测结果的独立性,防止重复检测的差异化问题,未能及时检测的样品需要在4度冰箱保存,目前,可以将检测过程中对应的检测样品进行多组备份,以样品多组检测的方式防范单独重复性检测造成的影响。